脾细胞是ELISpot和FluoroSpot测定中使用最多的细胞，至少对小鼠和大鼠样本而言是如此。脾细胞可以很容易地从脾脏中分离出来，而不需要Ficoll分离。细胞可以在分离后直接使用，也可以冷冻保存，并在以后批量使用。
下面是编译自https://www.mabtech.com/knowledge-hub/isolation-freezing-and-thawing-splenocytes的关于如何最好地（i）分离、（ii）冻存和（iii）复苏脾细胞的详细指南。
1.把脾脏倒进培养皿里。如有需要，使用剪刀、镊子或镊子去除多余的脂肪和组织。
2.将细胞滤网放入新的培养皿中，将脾脏转移到滤网中。加入5毫升培养基。
3.使用注射器的扁平柱塞端，通过细胞过滤器将脾脏匀浆到培养皿中。
4.用5ml培养基将细胞滤网中的细胞冲洗到培养皿中。
5.将脾细胞从培养皿转移到15ml离心管中。
6.将试管静置一分钟，让大块沉淀物沉淀或使用无菌巴斯德移液管去除团块和粘连体。将脾细胞悬浮液转移到新的15ml离心管中，再加入培养基重悬。
7.以300xg离心10分钟。
8.去除上清并将细胞沉淀重悬于15ml培养基中。
9.记下体积，取一小份进行细胞计数。
10.以300xg离心10分钟。（提示：在此步骤中对细胞进行计数）
11.如果要立即使用细胞，则去除上清后，并通过轻轻吹打将细胞沉淀重悬于细胞培养基中，就可以用于基于细胞的免疫测定，如ELISpot、FluoroSpot和流式细胞术。如果需要冻存细胞，则进入下一步。
1.接着上一节第11步，去上清，在冷冻培养基中将细胞稀释至浓度为5-2500万个细胞/ml。如果您使用的是无血清冷冻培养基，则使细胞浓度达到100万个细胞/ml。
2.分装，例如，每支冻存管中分1 mL，并将冻存管转移至冷冻容器中。确保通过不断重悬使细胞保持悬浮状态。
3.迅速将冷冻容器置于-80℃冰箱中，并储存至少4小时，最多1周。
4.将冻存管从冷冻容器中转移至-150℃冰箱或液氮罐中长期储存。
1.将冻存管从冷冻库中迅速转移至37℃水浴中，解冻细胞，直至仅剩余少量冰晶。
2.向冻存管中缓慢加入0.5-1mL细胞培养基，重悬细胞，并从冻存管中转移至15mL 试管中。用1mL 细胞培养基冲洗冻存管，并将剩余细胞继续转移至 15mL试管中。最后再向试管中加入更多的细胞培养基。
3.以300xg离心10min。
4.去上清，轻拍试管，使沉淀物不那么致密。通过缓慢上下吸液，将细胞重悬于1mL 细胞培养基中。加入细胞培养基至总体积为15mL。
5.以300xg 离心10min。
6.去上清，将沉淀重悬于1mL 细胞培养基中。添加更多的细胞培养基（例如，5mL，取决于预期的细胞数量和所需的细胞浓度）。
7.将细胞置于CO2培养箱中1小时。保持瓶盖略微打开。（冻存培养基含有对细胞有毒性的DMSO，如果你要复苏多管，建议少拿几管操作，需尽快从第1步进到第2步）。
8.孵育后，重悬细胞，并使聚集的细胞碎片或团块沉淀（大约需要 min）。然后小心地将没有碎片的细胞悬液转移到新的15mL试管中。
9.计数细胞并测定细胞活力。可使用自动细胞计数器或使用显微镜的台盼蓝染色进行计数。如果细胞浓度低于所需浓度，再次离心细胞，重悬并稀释至正确体积。
